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¿Qué grosor tiene el tubo neural en la Etapa 10 en un embrión de pollo?


Como dice la pregunta, realmente estoy luchando por encontrar CUALQUIER sitio web / documento / artículo que indique esto. Quiero saber si el tubo neural todavía tiene una célula de grosor y está en la etapa 10 de desarrollo. Cualquier evidencia que pueda proporcionarse para demostrar esto sería útil.

Gracias


Embrión de pollo: disección y estructura | Zoología

Romper la cáscara de huevo por el extremo estrecho golpeándola suavemente con el mango de un bisturí. Retire la cáscara de huevo en pedazos con un par de pinzas hasta que la abertura sea lo suficientemente grande para verter el contenido sin dañar la membrana vitelina alrededor de la yema.

Vierta el contenido del huevo en una placa de Petri limpia. En el polo del animal, el embrión aparece como un pequeño cuerpo blanco en la superficie de la yema en el centro. Sostenga la membrana vitelina con un par de pinzas finas y córtela cerca del embrión con unas tijeras finas y afiladas.

Separe el embrión de la yema subyacente y transfiéralo a un vidrio de reloj que contenga una solución fisiológica. Lavar la yema con un cepillo fino. Teñir el embrión con bórax carmín en un vaso de reloj. Lavar, deshidratar, aclarar y montar en bálsamo de Canadá o DPX.

Estructura diferente de un embrión de pollo:

Estructura de un embrión de pollo de 18 horas:

1. Área opaca y área pelúcida bastante diferenciadas.

2. Rayo primitivo, un engrosamiento mediano longitudinal.

3. Surco neural, pliegues neurales, bolsa subcefálica, proamnion y pliegue cefálico diferenciado.

Estructura de un embrión de pollo de 24 horas:

1. El área vasculosa y el área pelúcida son distintas.

2. Racha primitiva en estado reducido.

3. Pliegues neurales bien desarrollados hacia el extremo anterior.

4. Vesículas ópticas primarias en una etapa temprana de desarrollo.

5. Diferenciación del intestino anterior perceptible.

6. Rudimentos cardíacos pareados con presencia de aortas dorsal y ventral.

7. Somitas cuatro pares en la mitad del cuerpo.

Estructura de un embrión de pollo de 33 horas:

1. Racha primitiva restringida al extremo posterior.

3. Pliegues neurales fusionados en la región del cerebro excepto el neuroporo.

4. Tres vesículas cerebrales primarias, prosen & shycephalon, mesencephalon y rhom & shybencephalon diferenciadas.

7. Corazón de rudimento tubular y doblado hacia la derecha.

Estructura de un embrión de pollo de 48 horas:

1. Racha primitiva muy reducida.

2. Amnios en una etapa muy temprana.

3. Flexión craneal y cervical desarrollada y tímida.

4. Tubo neural diferenciado en cerebro y médula espinal.

6. Vesículas auditivas distintas.

7. Tres pares de arcos arteriales surgen de la aorta ventral.

Estructura de un embrión de pollito de 72 horas:

1. La flexión craneal es máxima.

2. Presencia de rudimentos de apéndice.

3. Copas ópticas con retina y lentes distintos y cerrados.

4. Vesículas auditivas conectadas a la apertura ectodérmica a través del conducto endolinfático.


Expansión del cerebro en el embrión de pollo iniciada por la oclusión producida experimentalmente del neurocele espinal

El cerebro se expande en el embrión de pollo temprano por la presión generada por la acumulación de líquido cefalorraquídeo (LCR) en un tubo neural cerrado. El sellado del tubo neural se produce como resultado de la oclusión del neurocele espinal rostral y antes del cierre del neuroporo posterior. Previamente hemos demostrado la dependencia de la expansión normal del cerebro de la presión intraluminal. Sin embargo, todavía teníamos que demostrar que la expansión del cerebro en realidad depende de la oclusión natural del neurocele espinal. Para demostrar tal dependencia, ocluimos experimentalmente los neuroceleros espinales de embriones 5 horas más jóvenes que los embriones en etapa 11 (en los que la oclusión del neurocele se produce de forma natural). Los embriones de pollo en etapa 10 se cultivaron ex ovo y se clasificaron críticamente, y sus neuroceleros espinales se ocluyeron mediante microcauterio. Todos los embriones se fotografiaron inmediatamente y a las 5, 12 y 24 horas después de la cauterización. Se hicieron secciones seriadas de embriones seleccionados, en los que se midieron las áreas tanto del cerebro como de la cabeza. Se utilizaron pruebas no paramétricas de suma de rangos de Wilcoxon-Mann-Whitney, estimadores de Hodges-Lehmann, técnicas de arranque y pruebas de aleatorización de remuestreo para determinar si los aumentos en las áreas del cerebro y la cabeza de los embriones experimentales eran significativamente diferentes de los de los embriones de control durante tres intervalos distintos de expansión: 0-5, 5-12 y 0-12 h. De 0 a 5 h, los cerebros de los embriones ocluidos precozmente se expandieron significativamente más que los cerebros de los controles no ocluidos. De 5 a 12 horas, los cerebros de los embriones con neuroceleos ocluidos naturalmente crecieron significativamente más grandes que los cerebros de los embriones con neurocele ocluidos precozmente. A las 12 h, no parecía haber diferencia en el tamaño del cerebro para estos dos grupos. Concluimos que los datos apoyan la hipótesis de que la expansión del cerebro depende directamente de la oclusión del neurocele espinal.


Electroporaciones in ovo de embriones de pollo HH estadio 10

El gran tamaño y el desarrollo externo del embrión de pollo lo han convertido durante mucho tiempo en una herramienta valiosa en el estudio de la biología del desarrollo. Con el advenimiento de las técnicas de biología molecular, el polluelo se ha convertido en un sistema útil para estudiar la regulación y función de los genes. Mediante la electroporación de construcciones de ADN o ARN en el embrión de pollo en desarrollo, los genes pueden expresarse o destruirse para analizar la función genética in vivo. De manera similar, las construcciones informadoras pueden usarse para el mapeo del destino o para examinar elementos reguladores de genes putativos. En comparación con experimentos similares en ratones, la electroporación de pollitos tiene las ventajas de ser rápida, fácil y económica. Este video demuestra primero cómo hacer una ventana en la cáscara del huevo para manipular el embrión. A continuación, se visualiza el embrión con una solución diluida de tinta china inyectada debajo del embrión. Se utilizan una aguja de vidrio y una pipeta para inyectar ADN y tinte verde rápido en el tubo neural en desarrollo, luego se colocan electrodos de platino paralelos al embrión y se administran pulsos eléctricos cortos con un generador de pulsos. Finalmente, el huevo se sella con cinta adhesiva y se vuelve a colocar en una incubadora para su posterior desarrollo. Además, el video muestra el almacenamiento y la manipulación adecuados de los huevos y analiza las posibles causas de la pérdida de embriones después de la electroporación.


De la etapa de la racha primitiva a la aparición de los somitas

Fig. 11. Vista dorsal de todo el embrión de pollo de 18 horas de incubación

Figura 12. Diagramas esquemáticos para mostrar la extensión del mesodermo durante la última parte del primer día de incubación.

Fig. 13. Secciones de pollito de 18 horas

Fig. 14. Vista dorsal de todo el embrión de pollo de aproximadamente 21 horas de incubación


Desarrollo del pollito (con diagrama) | Vertebrados | Chordata | Zoología

Es preferible estudiar la embriología del polluelo o del ave común (Gallus gallus) a la de la paloma (Columba livia) debido a varias ventajas.

La embriología del polluelo se ha elaborado más extensamente sólo debido a las siguientes razones:

1. Los huevos de aves de corral son grandes o de tamaño conveniente, fácilmente disponibles durante todo el año y pueden incubarse artificialmente.

2. Las diversas etapas de desarrollo pueden estar fácilmente disponibles en condiciones de laboratorio con fines experimentales.

3. Además, el proceso de desarrollo se ha desarrollado más a fondo en las aves de corral.

4. La embriología del pollito guarda muchas semejanzas con la de los reptiles y mamíferos. Un estudio comparativo de la embriología de diferentes aves muestra que es esencialmente similar en todas las aves con solo pequeñas diferencias sin importancia. A pesar de estas razones, la embriología del pollo es importante debido a su importancia filogenética. En polluelo, el desarrollo es directo sin un estadio larvario.

Fertilización:

Los óvulos se liberan del ovario en forma de ovocitos primarios. La segunda división de maduración ocurre después de la ovulación en el oviducto. El ovocito primario liberado en el celoma corporal es agarrado y tragado por el ostium del oviducto.

El ovocito u óvulo secundario después de la segunda división de maduración está rodeado por varios (5 o 6) espermatozoides que entran en él (poliespermia), pero solo un espermatozoide tiene éxito en el proceso de fertilización. El núcleo de un espermatozoide se fusiona con el núcleo femenino (anfimixis) y los núcleos de otros espermatozoides se degeneran.

A medida que el óvulo fertilizado pasa hacia abajo dentro del oviducto, rota, se escinde y varias membranas accesorias del óvulo se depositan sobre el óvulo en desarrollo. Por tanto, la fertilización es interna. Las diversas membranas del huevo secretadas alrededor del huevo son la albúmina, las membranas de la cáscara y la cáscara.

Estructura del huevo de gallina:

El huevo mide unos 3,0 cm de diámetro y es polilecital. Está completamente lleno por la yema y sobre él, es decir, en el polo animal se encuentra un pequeño disco citoplasmático con un núcleo. Este disco se llama blastodisc. La yema tiene una masa central de yema blanca alrededor de la cual se alternan capas concéntricas de yema amarilla y blanca. La yema blanca central en forma de matraz llamada latebra corre desde el centro hasta la parte inferior del blastodisco y allí se extiende para formar el núcleo de Pander.

La yema y el blastodisco están delimitados por una membrana plasmática y una membrana vitelina exterior, que es una forma convertida de zona radiata. La membrana vitelina es de doble origen. La capa interna de esta membrana se produce en el ovario entre el ovocito y las células del folículo y está compuesta por fibras muy resistentes. La capa externa se forma en la parte superior de la trompa de Falopio.

La yema contiene 48,7% de agua, 32,6% de fosfolípidos y grasas, 16% de proteínas, 1% de carbohidratos y 1,1% de otras moléculas químicas. Sus proteínas se encuentran en forma de fosvitina y lipovitelina o livetin. La grasa es predominantemente grasa neutra (50%), el resto son fosfátidos, cerebrósidos y colesterol.

El huevo fertilizado o cigoto está cubierto por una capa de albúmina viscosa densa que forma una capa delgada de chalazífera alrededor de la membrana vitelina. Esta albúmina densa forma dos cordones retorcidos o chalazas, uno en cada extremo del cigoto. Se forman por rotación del huevo durante su movimiento a través del oviducto.

Alrededor de la capa chalazífera hay una capa gruesa de albúmina acuosa. Toda la albúmina es secretada por las paredes glandulares superiores o magnum del oviducto. Las funciones de la albúmina son proporcionar nutrición al embrión, sirve como depósito de agua y también actúa como envoltura protectora para proteger al embrión de lesiones mecánicas y químicas.

La albúmina y la yema también contienen una variedad de enzimas, vitaminas, pigmentos y fósforo. La parte del istmo del oviducto secreta dos membranas de concha hechas de fibras de queratina resistentes enmarañadas. Las dos membranas de la cáscara se aplican de cerca, excepto en el extremo romo del huevo, donde están separadas por un espacio de aire formado después de que se pone el huevo. Las glándulas nidamentales del oviducto secretan una cáscara calcárea porosa que pronto se endurece.

Está perforado por una gran cantidad (alrededor de 7.000) de poros finos llenos de una proteína relacionada con el colágeno. El diámetro de los poros varía de 0,04 a 0,05 mm. Estos poros permiten el intercambio de gases (oxígeno y dióxido de carbono) durante la respiración del embrión en desarrollo. El huevo se pone 24 horas después de la fertilización, y su desarrollo posterior tiene lugar cuando la hembra incuba el huevo. La incubación debe continuar de manera constante durante 21 días a una temperatura de 103 ° F.

Escisión y voladura:

La escisión es meroblástica o discoidal y se limita únicamente a ser un disco germinal o blastodisco. No segmenta la yema del huevo polilecítico y más tarde finalmente se ve rodeada por los tejidos en crecimiento del embrión. Las dos primeras escisiones forman ángulos rectos entre sí en el centro del blastodisco. Estos surcos de hendidura no cortan completamente el disco germinal en el plano vertical.

El tercer conjunto de surcos de hendidura es vertical y atraviesa el segundo conjunto de surcos verticales. El cuarto surco de hendidura también es de corte vertical y circular a través de todos los surcos de hendidura, formando ocho blastómeros centrales que están rodeados por ocho blastómeros marginales. Por lo tanto, estos surcos de escisión separan los blastómeros centrales hijos entre sí, pero no de la yema. Los blastómeros centrales son continuos con la yema subyacente en sus extremos inferiores.

Los blastómeros marginales son continuos con el citoplasma no hendido en sus bordes externos. Otras escisiones son irregulares. Las células centrales se dividen más rápidamente. Las células marginales también se dividen por la aparición de nuevos surcos horizontales y radiales. Las células internas recién formadas de los blastómeros marginales se agregan a las células centrales, lo que da como resultado el aumento de volumen de esta área. Los surcos radiales se extienden periféricamente y estas células periféricas siguen siendo continuas con el citoplasma periférico no hendido.

En la etapa posterior de la escisión, los blastómeros del área central se separan de la yema subyacente debido a la aparición de una escisión horizontal en estas células. Esta hendidura se extiende periféricamente cortando los extremos internos de los blastómeros. Así, también aparece un espacio al principio debajo de las celdas centrales que también se extiende periféricamente a medida que la hendidura horizontal se extiende hacia afuera.

La cavidad debajo de las células centrales, es decir, entre las células centrales y la yema, se llama cavidad subgerminal, que está llena de un líquido que se difunde desde la albúmina a través de la membrana vitelina. Por lo tanto, debido a la escisión adicional, el blastodisco se vuelve celular, llamado blastodermo, un disco redondo, de 5 a 6 células de profundidad en el centro pero solo de 1 a 2 células de profundidad en la periferia.

La aparición de la cavidad subgerminal separa el blastodermo de la yema subyacente, pero las células marginales permanecen superpuestas a la yema. El embrión ahora se llama etapa de blástula. En la etapa de blástula, el embrión llega al útero. Puede compararse con la blástula de Amphioxus y la rana, su cavidad subgeminal es equivalente al blastocele, el blastodermo es el polo animal y la yema es el polo vegetal.

Durante la última parte de la escisión, aproximadamente de 12 a 14 horas después de que el óvulo llega al útero o de 6 a 8 horas antes de que se ponga el huevo, algunas células en el lado interno o inferior del blastodermo se desprenden o deslaminan del blastodermo y caen sobre el blastodermo. piso de la cavidad subgerminal debido a la presencia de relativamente más yema. La delaminación de estas células vitelinas del blastodermo comienza en el borde posterior y se extiende hacia adelante hasta que el blastodermo completo se libera de las células vitelinas.

Como resultado, la capa epitelial en la región central del blastodermo se vuelve más delgada (pocas capas de células) y transparente. Por lo tanto, esta región se llama área pelúcida porque parece ser transparente cuando se mira desde el lado superior. La parte periférica del blastodermo, las células de la yema de huevo, no está deslaminada (desprendida), por lo que esta parte del blastodermo parece ser opaca, porque debajo de estas células no hay blastocele.

Esta región del blastodermo se denomina, por tanto, área opaca. Estas células delaminadas en el borde posterior del área pelúcida se unen gradualmente entre sí, formando una capa continua de células aplanadas, que se extiende hacia delante. Esta capa se llama hipoblasto y la capa superior es el epiblasto que contiene células ectodermo y mesodermo. El hipoblasto está compuesto exclusivamente por células endodermo.

La hembra pone el huevo aproximadamente en el momento en que se forma la blástula o incluso un poco más tarde.

Mapas de destino presuntivo de Blastula:

Los mapas de destino de la blástula de pollito se han preparado utilizando tinciones vitales como el carmín o las partículas de carbón (carbón vegetal) o la timidina radiactiva. Muestra que los blastómeros del área opaca no forman parte del embrión propiamente dicho, solo forman membranas extraembrionarias.

El epiblasto y el hipoblasto del área pelúcida tienen destinos diferentes en el curso del desarrollo embrionario. Los mapas de destino preparados mediante el uso de timidina tritiada han mostrado las siguientes estructuras en el epiblasto: En el centro del área pelúcida se encuentra una pequeña área destinada a producir la notocorda. Posteriormente, en el plano mediano se encuentra un área ovalada alargada de presunto endodermo que formará el intestino.

Más hacia el borde posterior del área pelúcida se encuentra el endodermo extraembrionario que formará el revestimiento del saco vitelino. A la derecha e izquierda del presunto notocorda y endodermo, y posterior al endodermo extraembrionario, se encuentran las diversas subdivisiones del presunto mesodermo, es decir, placa precordal o mesodermo de la cabeza, somitas mesodérmicas, mesodermo de placa lateral y mesodermo extraembrionario.

La mitad anterior del epiblasto es el presunto ectodermo que contiene el presunto área de la placa neural central, anterior a ella se encuentra la presunta epidermis embrionaria y externa a ella en forma de anillo completo está el ectodermo extraembrionario.

Gastrulación:

La gastrulación incluye los siguientes dos tipos de movimientos morfogenéticos:

Implica solo el epiblasto que contiene células del ectodermo, células mesodermo y notocordal. Incluye convergencia, invaginación e involución. La formación de la veta primitiva y el proceso de la cabeza se debe a la embolia.

Incluye el crecimiento excesivo de ectodermo o epiblasto y también de hipoblasto.

Formación de racha primitiva:

Varias células mesodérmicas y endodérmicas prospectivas que forman la notocorda del epiblasto convergen hacia el borde posterior del área pelúcida y forman un engrosamiento cónico en la línea media, llamado línea primitiva inicial. Aparece después de 6 a 7 horas de incubación.

La racha primitiva crece anteriormente debido a la proliferación de sus propias células, así como a la adición de células que migran a ella desde las partes anterior y lateral del área pelúcida. El eje alargado de la raya primitiva marca el eje anteroposterior del futuro embrión. Por lo tanto, eventualmente se extiende a aproximadamente tres quintas partes de la longitud total del área pelúcida.

Esta es la racha primitiva definitiva completamente desarrollada y generalmente se completa después de 18 a 19 horas de incubación. El área pelúcida también adquiere forma de pera. A lo largo de la mitad de la veta primitiva, cuando está completamente desarrollada, corre un estrecho surco, el surco primitivo. En el extremo anterior de la línea primitiva hay un engrosamiento, el nudo primitivo o nodo de Hensen & # 8217s. El centro del nodo de Hensen & # 8217s está excavado para formar una depresión en forma de embudo.

Los movimientos en el blastodermo que conducen a la colocación final de las células en el hipoblasto y a la formación de la línea primitiva en el epiblasto pueden denominarse movimientos pregastrulares.

Invaginación e involución:

En la etapa de racha primitiva corta, las células del blastodermo ya comienzan a migrar (invaginar e involucionar) hacia la cavidad del blastocele entre el epiblasto y el hipoblasto. Las células que migran son reemplazadas por más células de epiblasto que convergen hacia el área de la línea.

Las células que migran hacia adentro también se extienden hacia los lados y hacia adelante desde el extremo anterior de la línea primitiva. Las células notocordales emigran a través del pozo primitivo. Las células endodérmicas invaginan a través de la parte de la línea que se encuentra justo detrás del pozo primitivo.

Las células mesodérmicas de los somitas simplemente siguen el camino de las células endodérmicas. Mientras que las células del mesodermo de la placa lateral invaginan a través de la sección media de la línea primitiva, pero solo después de la desaparición del endodermo del área pelúcida. El mesodermo extra-exbrionario (del saco vitelino) migra por la parte posterior de la veta primitiva.

Mientras tanto, algunas células de hipoblastos se expanden hacia el área opaca para convertirse en endodermo extraembrionario (el revestimiento del saco vitelino), mientras que otras células de hipoblastos se adhieren a las células mesodérmicas y notocordales gracias a la migración de estas últimas.

Formación del proceso de la cabeza:

Las posibles células notocorales convergen en el nódulo, se hunden a través de él y luego pasan directamente hacia adelante como una lengua de tejido conocida como proceso de la cabeza o proceso de notocorda.

Desaparición de la racha primitiva:

Con la desaparición gradual de las células endodérmicas, notocordales y mesodérmicas de la línea primitiva, comienza a encogerse desde el lado anterior hacia el posterior y sus restos se incluyen en parte en la yema de la cola y en parte en la región cloacal del embrión.

Desarrollo del proceso de la cabeza:

El área de la línea media del tejido notocordal se convierte en una varilla rígida, anterior a la línea primitiva que retrocede. A medida que la racha retrocede posteriormente, el embrión se desarrolla por delante. El proceso de la cabeza consiste en una masa central gruesa de células y alas laterales más difusas. Al principio también se mezcla en la línea media con el hipoblasto.

La porción central más gruesa forma la notocorda definitiva, mientras que las alas laterales forman el mesodermo paraxial (somítico). Con su diferenciación, la notocorda se desprende del hipoblasto de abajo, excepto en el extremo. Por tanto, la etapa del proceso de cabeza se completa aproximadamente a las 20 a 25 horas de incubación. La gastrulación también se completa en esta etapa.

Finalización del endodermo:

Las primeras células que migran a través de la parte anterior de la estría forman el endodermo. A medida que el nódulo de Hensen retrocede hacia atrás y el proceso notocordal se alarga y se detiene, el presunto endodermo de la parte media y posterior del intestino, ubicado justo detrás del nódulo, migra hacia adentro como una tira endodérmica debajo de la notocorda.

El hipoblasto original en el piso del blastocele aporta una cantidad muy inferior al intestino, las células endodérmicas superiores migradas forman la mayor parte del intestino. En el pollo no se forma arquenterón durante la gastrulación.

Gastrula completamente formada:

La gástrula está completamente formada cuando la veta primitiva desaparece por completo. La gástrula completamente formada consta de tres capas germinales: ectodermo, cuerda-mesodermo y endo & shyderm. El ectodermo y la cuerda-mesodermo permanecen en continuidad a lo largo del eje de la línea primitiva. El endodermo también está unido con el mesodermo y el ectodermo en el extremo anterior y posterior de la línea.

Formación del tubo neural (neurogénesis):

El ectodermo, anterior y lateral al proceso de la cabeza, se vuelve más grueso para formar la placa neural mientras se desarrolla el proceso de gastrulación. La placa neural aparece en la región del cerebro. A medida que el nódulo de Hensen # 8217 se aleja más y más, partes de la placa neural se diferencian y las partes anteriores de la placa neural proceden a cerrarse en un tubo, el tubo neural.

La formación del tubo neural se produce debido al hundimiento de la placa neural debido a que se forma un surco neural a lo largo de su eje longitudinal. Sus márgenes elevados se denominan pliegues neurales, que se elevan y crecen hacia la línea media y se fusionan para formar el tubo neural.

Formación de Notocorda y Mesodermo:

Mientras que la placa neural se pliega en el tubo neural, la cuerda-mesodermo también se está diferenciando. Su parte más anterior, el mesodermo de la placa precordal da lugar al mesénquima de la cabeza, y detrás de él, las células notocordales se separan del resto de las láminas adyacentes del mesodermo y se diferencian en muescas. A cada lado de la notocorda hay tres hebras longitudinales o láminas de mesodermo.

1. Los mesodermos epímeros, axiales o somáticos son las hebras mediales dorsales más gruesas, que se fusionan anteriormente en el mesénquima de la cabeza.

2. Los mesómeros o hebras mesodérmicas intermedias se encuentran laterales al mesodermo axial. Son delgados en una etapa temprana.

3. Los hipómeros o el mesodermo de la placa lateral se encuentran debajo del mesómero.

Formación de somitas:

El mesodermo axial o somático pide diferenciarse después de aproximadamente 21 horas de incubación. Se convierte en una banda gruesa a cada lado de la notocorda y el cordón nervioso. A poca distancia anterior al nudo primitivo aparece una hendidura transversal a lo largo de cada banda, que marca la división entre el primer y el segundo somitas.

Aproximadamente una hora después, aparece una segunda hendidura posterior a la primera hendidura y, por tanto, se forma una segunda somita. Este proceso continúa aproximadamente después de cada hora hasta 20 horas. Después de eso, la formación de somitas se vuelve algo más lenta.

Los primeros tres pares de somitas mesodérmicas se forman en el mesodermo paraxial en la presunta región del cerebro posterior, y otras somitas mesodérmicas aparecen cuando el nudo primitivo regresa. Las somitas, cuando se forman por primera vez, son masas de células mesodérmicas con una pequeña cavidad en el centro. Las células están dispuestas radialmente alrededor de la cavidad central.

Con un mayor desarrollo, se extienden en la dirección dorso-ventral y se aplanan mediolateralmente. La cavidad (miocele) de cada somita también cambia, de esférica a una ranura vertical estrecha. Una pared interior y una pared exterior se vuelven claramente distinguibles, correspondientes a las capas parietal y visceral de las placas laterales. La pared interna de los somitas se vuelve mucho más gruesa y produce tejido esquelético y los músculos estriados voluntarios del cuerpo.

El exterior de los somitas es más delgado y forma la capa de tejido conectivo de la piel y, por lo tanto, se llama dermatoma. Además, la parte dorsal de la pared interna del somita que es la fuente de los músculos somáticos del cuerpo se llama miotoma, mientras que el borde inferior de la pared interna se llama esclerotomo que es responsable del tejido esqueletogénico. El esclerotomo se rompe en una masa de células mesenquimales.

Las células migran hacia los espacios que rodean la notocorda y la médula espinal, envuelven estos órganos y luego se diferencian en cartílago, formando así los cuerpos y arcos neurales de las vértebras. Los arcos hemales y las costillas también están formados por estas células.

Formación de Coelom:

Una vez que se han formado los somitas y las placas laterales, el mesodermo de la placa lateral se divide en dos capas: la capa externa o parietal y la capa interna o visceral. La cavidad entre los dos es el celoma. Por tanto, el origen del celoma es esquizocelico.

Plegado de embrión:

Todo el blastodermo no forma el embrión. Su porción central, denominada área pelúcida, solo forma el embrión, y su porción externa, el área opaca forma las membranas extraembrionarias, como el saco vitelino, el amnios, el corion y la alantoides.

El cuerpo del embrión se separa del saco vitelino. Esto se logra mediante la formación de pliegues que aparecen alrededor del cuerpo del embrión. Los pliegues involucran las tres capas germinales y se dirigen hacia abajo y hacia adentro, socavando el cuerpo del embrión propiamente dicho. Se conocen como pliegues corporales. Los distintos pliegues no aparecen simultáneamente.

El primero en aparecer es el pliegue de la cabeza justo delante de la cabeza. Socava la cabeza y la parte anterior del tronco del embrión, de modo que estas partes se proyectan libremente sobre la superficie del saco vitelino. Las partes lateral y posterior del pliegue corporal se desarrollan poco después.

El pliegue posterior socava el extremo de la cola y la parte posterior del tronco, que también se proyectan libremente sobre la superficie del saco vitelino. Estos pliegues corporales se contraen gradualmente debajo del embrión y, finalmente, el cuerpo del embrión se conecta con el saco vitelino y otras membranas extraembrionarias mediante un tallo estrecho, el cordón umbilical.

Flexión y torsión:

Cuando se forma la cabeza se inclina hacia abajo ventralmente con respecto al eje principal del embrión, esta flexión se llama flexión craneal. Luego la cabeza al principio, y gradualmente todo el cuerpo se gira hacia los lados para que el embrión llegue a descansar sobre su lado izquierdo sobre la yema, este giro dextral se conoce como torsión. El extremo anterior de su región cervical se dobla aún más hacia su superficie ventral.

Varios órganos se forman en el tercer y cuarto día de incubación, como el sistema nervioso, los órganos de los sentidos, cuatro pares de bolsas faríngeas de las cuales solo los tres primeros pares se encuentran con el ectodermo para abrirse como hendiduras branquiales, cinco pares de arcos viscerales , corazón y vasos sanguíneos, y somitas segmentarias emparejadas.

Membranas extraembrionarias (fetales) de pollito:

El blastodermo, además de formar el embrión, da lugar a algunas otras estructuras que no participan en la formación del embrión propiamente dicho, sino que son externas al embrión en desarrollo. Estas estructuras se denominan colectivamente membranas fetales, membranas embrionarias o membranas extraembrionarias.

Estas membranas son esenciales para el desarrollo completo del embrión. Estas membranas fetales se ocupan de la nutrición, la excreción, la respiración y la protección contra la desecación y las conmociones cerebrales. Estas membranas fetales son amnios, corion o serosa, alantoides y saco vitelino.

Estas membranas son estructuras compuestas que involucran dos capas germinales. El amnios y el corion están compuestos por ectodermo extraembrionario y capa somática del mesodermo, ambos se denominan colectivamente somatopleura. Mientras que la alantoides y el saco vitelino están formados por endodermo extraembrionario y capas de mesodermo esplácnico, ambos se denominan colectivamente esplácnopleure.

Desarrollo de membranas extraembrionarias:

Durante la neurulación, el mesodermo de la placa lateral se divide en una capa somática externa que se encuentra debajo del ectodermo y una capa interna que se encuentra fuera de la capa del endodermo. Entre estas dos capas de mesodermo se encuentra el espacio celómico.

El ectodermo y la capa somática del mesodermo se denominan colectivamente somatopleura, mientras que la capa esplácnica del mesodermo y el endodermo forman la esplácnopleura. Durante las etapas posteriores del desarrollo, la somatopleura y la esplacnopleura se extienden gradualmente hacia afuera más allá del embrión en desarrollo.

A medida que el cuerpo del embrión crece, se separa de las membranas fetales por la aparición de pliegues corporales: pliegues cefálicos, caudales y laterales. Estos pliegues limitan el cuerpo del embrión y separan la región embrionaria de la región extraembrionaria.

1. Desarrollo de amnios y corion:

El origen del amnios y el corion se considera en conjunto ya que se desarrollan simultáneamente a partir de la somatopleura extraembrionaria. Aproximadamente 30 horas de incubación, la somatopleura extraembrionaria del blastodermo se eleva frente al embrión como un pliegue, el pliegue crece y forma un arco sobre el embrión.

Forma una capucha somatopleúrica doble, llamada pliegue amniótico capfálico. A medida que este pliegue se extiende gradualmente hacia atrás, sus extremidades laterales que se extienden caudalmente, llamadas pliegues amnióticos laterales, se arquean sobre el embrión desde cualquier lado lateral. Aparece un pliegue o elevación similar sobre la cola, llamado pliegue amniótico caudal. Todos estos pliegues amnióticos convergen y se fusionan sobre el embrión, encerrándolo dentro de dos láminas de somatopleura de todos los lados excepto la región del tallo vitelino.

La región de unión de los pliegues amnióticos se llama conexión seroamniótica y el punto de fusión de los pliegues en forma de cicatriz se llama rafe seroamniótico. La conexión seroamniótica se abre antes de la eclosión del embrión. La fusión de los pliegues amnióticos produce dos cavidades en forma de saco, encerradas por dos láminas de somatopleura.

La lámina somatopleúrica interna se convierte en el amnios, que encierra al embrión dentro de la cavidad amniótica llena de líquido amniótico. Mientras que la lámina externa de somatopleura es el corion y la cavidad que se encuentra entre el amnios y el corion es la cavidad coriónica o celoma extraembrionario. Está revestido por mesodermo de somatopleura y splanchnopleure.

La somatopleura del amnios y el corion crece de forma continua periférica y lateralmente y finalmente encierra al embrión y también a las dos membranas fetales restantes.

Funciones de amnios y corion:

El amnios, el corion y la cavidad amniótica cumplen las siguientes funciones para el embrión:

una. El amnios protege al embrión de la desecación y los cambios bruscos de temperatura.

B. The amniotic fluid is an efficient shock absorber and protects the embryo from the mechanical -shocks.

C. The shell and shell membranes are protective and prevent desiccation of the embryo.

D. The mesoderm of amnion during later development forms muscle cells which contract rhythmically, rocking the embryo with in the amniotic fluid so as to prevent it from adhesion to the embryonic membranes.

2. Development of Allantois:

About the third day of incubation the floor of the endodermal hindgut begins to bulge as a bladder, called the allantois. The allantoic evagination is formed from the splanchnopleure, that is, inner layer of endoderm and an outer layer of splanchnic mesoderm. It grows rapidly and spreads into the extra-embryonic coelom, the space between the yolk sac, the amnion and the chorion.

The distal part of the allantois expands and remains connected with the hindgut of the embryo by means of a narrow allantoic stalk. When the body folds contract, separating the embryo from the extra-embryonic parts, the allantoic stalk is enclosed together with the stalk of yolk sac, forming an umbilical cord.

As the allantois vesicle enlarges and spreads outward, its distal part becomes flattened and expands between the amnion and yolk sac on one side and the chorion on the other side. Due to this the splanchnic mesoderm of the allantois fuses with the inner somatic mesoderm of the chorion to form an allanto-chorion.

The allanto-chorion grows around the albumen of the egg to enclose it in an albumen sac. It aids in absorption of water and albumen. The allantois becomes highly vascular due to the appearance of blood vessels in the splanchnopleure. It also receives a pair of allantoic or umbilical arteries, and its blood is returned into a pair of allantoic or umbilical veins.

The chorio-allantoic circulation continues until the young chick breaks the egg-shell and begins to breathe the surrounding air. Thus, the umbilical vessels close, the circulation ceases and the allantois dries up and separates from the body of the young chick. At the time of hatching, the allantoic vesicle with excretory wastes detached from allantoic stalk and left attached to the broken shell.

Functions of Allantois:

The allantois serves following functions for the embryo:

I. The allantois serves as an embryonic urinary bladder collecting uric acid from the kidneys which is, thus, prevented from escaping into other parts of the embryo where it might be harmful.

ii. The vascular allanto-chorion is in contact with shell membranes and it brings about the respiration of the embryo by an exchange of oxygen and carbon dioxide through the porous shell.

iii. Development of Yolk-Sac:

During neurulation, the gut region of embryo has a roof and side but no floor. The ventrally open gut rests on the yolk mass. The formation of yolk sac first among foetal membranes is essential since yolk is supplied to the developing embryo with the help of yolk sac. The extra-embryonic splanchnopleure grows over the yolk and eventually surrounds the entire yolk to form the yolk sac.

It has an inner layer of endoderm and an outer layer of splanchnic mesoderm. The yolk sac in the beginning is joined by a wide yolk stalk to the midgut of the embryo. But later on, as the body folds move toward one another beneath the embryo, a floor of the gut is formed except a small region of the midgut through which it communicates with the yolk sac.

Thus, the yolk sac cavity remains in continuity with the gut cavity through yolk duct of yolk sac stalk. The endodermal surface of the yolk sac is thrown into folds called the yolk sac septa that penetrate the yolk mass. The rich blood circulation develops within the splanchnic mesoderm layer of the yolk sac. These are the paired vitelline arteries and veins, now called the omphalomesenteric blood vessels.

The endodermal cells of the yolk sac secrete digestive enzymes which digest the yolk. The digested yolk is collected by left and right vitelline veins, both of which open into an unpaired ductus venosus which open into sinus venosus of the heart.

Thus, the yolk sac serves as a digestive and absorptive surface by which yolk is made available to the embryo. Shortly before hatching the shrivelled up remains of the yolk sac is retracted into the abdominal cavity of the embryo, and the walls of the abdominal cavity close behind it.

The amnion, chorion, and allantois are devices by which the embryo can develop on dry land (as also in reptiles and mammals). The yolk sac (also found in fishes, reptiles and mammals) develops for the absorption of yolk.

Eclosión:

The early embryo was at right angles to the long axis of the egg, later it comes to lie along the long axis with its head near the blunt end. The beak of the chick is covered by a horny caruncle by which it first pierces the inner shell membrane and air is taken into the lungs from the air space, soon after the caruncle breaks the egg shell and the chick emerges after 21 days of incubation at 103°F.

Since the inside surface of shell is concave, it is easier for the chick to break open the shell and shell membrane as all the force is concentrated at one point. The outer surface of the shell is convex, hence, the force exerted on the outside of the shell is distributed on all sides and the shell does not break easily.


INTRODUCCIÓN

To culture intact gastrulating and neurulating chick embryos, we have developed a method, called EC (Early Chick, pronounced EASY) culture, that is quicker and easier to perform than the method developed by New (New, 1955 reviewed in New, 1966 ) and that eliminates the glass rings and watch glasses required in his original procedure. Additionally, development of the extraembryonic vasculature occurs significantly better in EC culture. Our method uses a piece of filter paper, with a central aperture, as a frame to hold the blastoderm and vitelline membranes under tension. The EC method provides an efficient and simple means of setting up a large number of whole chick embryos for culture at one sitting. In essence, our method derives from Sorokin's technique, which has been used for many years as a way of harvesting whole-mount embryos, either for fixation or as an easy way to isolate embryonic material for grafting (Menkes et al., 1961 Flamme, 1987 ). We have extended this technique to whole-embryo culture, as described below.

Several procedures have been developed to culture chick embryos after explanting them from the yolk (Spratt, 1947 New, 1955 DeHaan, 1963 Flamme, 1987 Kucera and Burnand, 1987 Flamme et al., 1991 Connolly et al., 1995 for reviews see Hamburger, 1960 New, 1966 DeHaan, 1967 Stern, 1993 Stern and Holland, 1993 Selleck, 1996 Darnell and Schoenwolf, 2000 see also Cockroft, 1997 , for a review of culture methods in various vertebrates). New's method, in which embryos are cultured on their vitelline membranes, is thus far unsurpassed for the culture of early stages (e.g., unincubated through neurulation stages X–XIV, Eyal-Giladi and Kochav, 1976 stages 1–10, Hamburger and Hamilton, 1951 ).

New's method made it possible to perform microsurgical manipulations on whole chick embryos in vitro (New, 1955 , and reviewed by New, 1966 DeHaan, 1967 Selleck, 1996 the last shows an excellent picture series of the procedure), thereby providing much easier access to very early stages as compared to in ovo approaches. When manipulated in ovo, young embryos often fail to develop further without severe morphological defects (especially in the neural tube and cardiovascular system e.g., Fisher and Schoenwolf, 1983 ), due at least in part to dehydration and/or changes in mechanical tension after windowing of the egg shell (Fineman et al., 1986 ). Moreover, manipulations can be done only from the dorsal side on embryos exposed in ovo, and unless a contrast agent such as ink is injected sub-blastodermally, it is difficult to see and to stage young embryos.

New's method utilized glass rings to hold the vitelline membranes under tension, with the embryos mounted ventral-side up on a watch glass containing a pool of albumen. Although improving access to early embryos immeasurably, New's method still has severe limitations. First, setting up embryos for culture is an exacting, laborious, and time-consuming process. Second, obtaining the correct amount of tension is empirical, as is the adjustment of the amount of fluid contained within the well formed by the ring. Third, stretching the vitelline membranes to achieve the correct amount of tension often results in mechanical damage to the embryo, and the blastoderm frequently becomes detached from the vitelline membranes, preventing further development. Finally, it can be difficult to obtain appropriate glass rings and watch glasses necessary to perform the culture. Variations of New's classic protocol can be found in DeHaan ( 1967 ), Selleck ( 1996 ), and Darnell and Schoenwolf ( 2000 ). In one of the most useful variations, embryos are cultured in a 35-mm Petri dish containing a semi-solid agar-albumen substrate, instead of in a watch glass containing liquid albumen (Darnell and Schoenwolf, 2000 ).

Here we describe EC culture and delineate its major benefits as compared with New culture. Prior to stage 8, embryos can be cultured only ventral-side up as in New culture, but after stage 8, embryos can be cultured either side up, as desired. The range of manipulations that can be performed include microsurgery, microinjection, grafting, bead implantation, and electroporation. The embryo can be viewed directly in EC culture using transillumination or epi-illumination, and its development can be followed using time-lapse video microscopy.


Abstracto

The distribution of fibronectin (FN) was studied by immunofluorescence during gastrulation and early neurulation in avian embryos. FN was first detected under the upper layer (ul), just prior to the streak appearance. During gastrulation, FN was restricted to the basement membrane of the ul. The streak initially appeared as a protruding cell mass limited by FN strands. Later on, FN disappeared locally where the streak sank into the space under the ul. In the streak, the invaginated cells separated and migrated laterally along the FN-rich basement membrane of the ul. FN appeared in the basal surface of the definitive endoderm, when it was completed. Our results suggest that, prior to gastrulation, passive cell movements occur in the absence of FN, while during gastrulation, FN is involved in active movements. In the head, early neurulation followed the separation of the notochord from the neural plate by a FN-rich basement membrane. In contrast, in the trunk, the neural groove appeared first and remained in close apposition with the notochord and somitic mesenchyme twice as long as in the head. An intense FN staining was revealed first between the neural tube and the somite, and later on between the neural tube and the notochord.

This work was supported by grants from the Fondation pour la Recherche Médicale and by the Délégation Générale à la Recherche Scientifique et Technique (81. E.1082).


Does Botox effect neural tube development in early chick embryos?

Botulinum toxin (BTX) is a potent neurotoxin produced by Clostridium botulinum and has wide usage in different areas. The current study aimed to analyze the effects of C. botulinum toxin on the central nerve system in chick embryos. Forty fertile Hubbard Broil eggs, all at Stage 8 of development, were divided into four equal groups: Group 1 embryos (norte=10), the control group, were explanted and grown for 18 h in a nutrient medium (thin albumin). Group 2 embryos (norte=10) were grown in medium containing 5 U BTX, Group 3 embryos (norte=10) in a medium containing 10 U BTX and Group 4 embryos (norte=10) in medium containing 20 U BTX. After the incubation period, 80% of Group 1 and 2 embryos and 90% of Group 3 and 4 embryos had intact neural tubes (PAG>0.05). The results of this study suggest that BTX had no additional effect on neural tube development in early chick embryos.

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Chicken stages - Hamburger & Hamilton staged the chicken embryo in 1951. The Hamburger Hamilton Stages are most commonly used series for chicken staging. The original paper had approx 25 citations between 1955 - 59, while in the year 1991 alone there were over 300 citations. Series of Embryonic Chicken Growth. J. Morphology, 88 49 - 92 (1951). Atlas recently republished by J.R. Sanes in Developmental Dynamics 195 229-275 (1993).

Original 1951 paper (and all data) was republished in 1992. <pubmed>1304821</pubmed> PDF

Note that there was also an earlier Witschi staging, and a 1900 staging series by Franz Keibel and Karl Abraham Ζ] , and an earlier (1883) series by Foster, Balfour, Sedgwick, and Heape. & # 919 & # 93


Ver el vídeo: Práctica: Desarrollo embrionario de un pollo (Diciembre 2021).