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Secuencia de nucleótidos


Así que soy de un departamento de informática y mi hermana, que está haciendo medicina, me pidió ayuda con esta pregunta. No tengo ni idea de por dónde empezar. Por favor ayuda. Entonces la pregunta es:

¿Cuál es la secuencia de nucleótidos de la bacteria Vibrio cholerae o la bacteria Treponema pallidum? o cualquier otra bacteria relacionada?

Después de obtener la secuencia de nucleótidos, ¿es posible usar BLAST (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) para alinear y comparar una secuencia de ADN de consulta con una base de datos de secuencias?

Por favor corríjame donde sea que me equivoque y gracias por ayudar


Hay al menos 102 genomas de la bacteria. Vibrio cholerae que han sido secuenciados. Por ejemplo, Vibrio cholerae 01 biovar El Tor La cepa N16961 tiene dos cromosomas que abarcan 4.033.464 pb en los que sus ORF codifican 3.827 proteínas y 122 ARN. Verifique aquí El ADN está disponible en NCBI como entradas AE003852 y AE003853.
Hay al menos 11 genomas secuenciados de Treponema pallidum. Por ejemplo, la cepa Fribourg-Blanc tiene 1.004 genes de proteínas y 54 genes de ARN distribuidos en un genoma de 1.140.481 pb. Entrada de secuencia de ADN NCBI NC_021179.1
Supongo que uno puede alinear múltiples secuencias de genomas completos si eso es lo que se pretende, pero no lo recomiendo a menos que uno esté listo para curar los resultados. En cambio, recomiendo estudiar un marco de lectura abierto dado usando su secuencia de ADN, o mejor aún, su secuencia de proteína correspondiente. BLAST debería ser muy útil para encontrar secuencias similares con las que comparar.


LOS SITIOS VINCULANTES PARA LOS ANTICUERPOS MONOCLONALES SOBRE LA HEMAGGLUTININA A / URSS / 90/77 (H1N1)

SECUENCIA DE NUCLEÓTIDOS DEL GEN HAI DE LAS VARIANTES MONOCLONALES

Las secuencias de nucleótidos del gen HA (porción HA1) del virus A / USSR / 90/77 parental y los clones variantes monoclonales se obtuvieron utilizando ADN de fragmentos de restricción marcados con 32P apropiados de pp392 como cebadores para secuenciar el ARNv mediante el método de terminación de la cadena didesoxi. (8). En el clon variante B-1-23, la secuencia de nucleótidos determinada a partir del ADN clonado (pp392) y la del ARNv difieren en una base de nucleótidos, i. mi. en la posición 599, T lee del ADN clonado mientras que C del ARNv, lo que da como resultado la diferencia de aminoácidos de la fenilalanina vs serina. En el presente estudio se adoptó el resultado obtenido a partir del ARNv.


ADN: mapeo de restricción y secuenciación de nucleótidos

Lea este artículo para obtener más información sobre el mapeo de restricción del ADN que implica el análisis de tamaño de los fragmentos de restricción y también para aprender sobre la secuenciación de nucleótidos del ADN para lo cual se han desarrollado dos técnicas:

(1) basado en el método enzimático llamado secuenciación de Sanger y (2) basado en el método químico llamado secuenciación de Maxam y Gilbert.

Mapeo de restricción de fragmentos de ADN:

Esto implica el análisis de tamaño de los fragmentos de restricción producidos por varias enzimas de restricción individualmente y en combinación. Por ejemplo, en la Fig. 3.2 se mapean los sitios de restricción de dos enzimas A y B. La escisión con A da fragmentos de 2 y 7 kilo bases de una molécula de 9 kb, por lo que podemos tener la posición de un solo sitio A desde un extremo.

De manera similar, B da fragmentos a 3 kb y 6 kb de distancia, por lo que tiene un solo sitio a 3 kb de un extremo, pero aún no está claro si este sitio está cerca del sitio A & # 8217s o está en el extremo opuesto del ADN. Esto se puede resolver mediante doble digestión. Si los fragmentos resultantes están a 2 kb, 3 kb y 4 kb de distancia, entonces A y B cortan en los extremos opuestos de la molécula si están a 1 kb, 2 kb y 6 kb de distancia, los sitios están cerca uno del otro. Vale la pena señalar aquí que el mapeo de moléculas reales rara vez es tan simple como esto.

Secuenciación de nucleótidos del ADN:

El uso preciso de codones, la información sobre mutaciones y polimorfismos y la identificación de secuencias de control de regulación de genes solo se pueden dilucidar analizando las secuencias de ADN. Se han desarrollado dos técnicas para esto, una basada en un método enzimático frecuentemente llamado secuenciación de Sanger y un método químico llamado secuenciación de Maxam y Gilbert.

Terminadores de cadena de secuenciación o didesoxinucleótido Sanger & # 8217s:

En este, la mezcla de reacción se divide en cuatro grupos, que representan los cuatro dNTP A, C, G y T. Además de todos los dNTP presentes en el tubo A, se añade un análogo de dATP (2 & # 8242, 3 & # 8242 ddATP ) que es similar a A pero no tiene grupo hidroxilo 3 & # 8242 y por lo tanto terminará la cadena en crecimiento. La situación para otros tubos ddC, ddG y ddT es idéntica excepto que contienen ddCTP, ddGTP y ddTTp respectivamente.

Dado que la incorporación de ddNTP en lugar de dNTP es un evento aleatorio, la reacción producirá una nueva molécula de longitud muy variable, pero todas terminando en el mismo tipo de base. Por tanto, se generan cuatro conjuntos de secuencias de ADN, cada una terminando en un tipo diferente de base, pero todas tienen un extremo 5 & # 8242- común. Las cuatro muestras etiquetadas y terminadas en cadena se desnaturalizan luego por calentamiento y se cargan una al lado de la otra para la electroforesis.

La electroforesis se realiza a 70 ° C en presencia de urea, para evitar la renaturalización del ADN. Se utilizan geles muy delgados y largos para una resolución máxima en una amplia gama de longitudes de fragmentos. Después de la electroforesis, la posición de las bandas de ADN radiactivo en el gel se determina mediante autorradiografía.

Dado que cada banda en la pista de trifosfato de didesoxiadenosina debe contener moléculas que terminan en adenina, y las de ddCTP terminan en citosina, etc., es posible leer la secuencia de la hebra recién sintetizada de la autorradiografía, siempre que el gel pueda resolver las diferencias. de longitud igual a un solo nucleótido. En condiciones ideales, se pueden leer secuencias de hasta aproximadamente 400 bases de longitud de un gel.

Secuenciación de PCR directa:

Es posible llevar a cabo la secuenciación de nucleótidos a partir de moléculas de doble hebra, como los vectores de clonación de plásmidos y los productos de PCR, pero el ADN de doble hebra debe desnaturalizarse antes de la hibridación con el cebador. En el caso de plásmidos, es suficiente una etapa de desnaturalización alcalina. Sin embargo, para los productos de PCR esto es más problemático y un foco de mucha investigación. A diferencia de los plásmidos, los productos de PCR son cortos y se reasocian rápidamente, por lo que evitar el proceso de reasociación o desviar la amplificación hacia una hebra mediante el uso de una relación de cebador de 100: 1 puede superar este problema hasta cierto punto.

Los desnaturalizantes como la amida de forma o el dimetilsulfóxido (DMSO) se emplean generalmente para prevenir la renaturalización de las cadenas de PCR después de su separación, es posible separar físicamente y retener una cadena de PCR incorporando una molécula como biotina en uno de los cebadores, que puede recuperarse. después de la PCR mediante cromatografía de afinidad con estreptavidina, dejando la cadena de PCR complementaria. Por lo tanto, proporcionó ADN monocatenario de alta calidad para la secuenciación.

Uno de los métodos más útiles para secuenciar productos de PCR se denomina secuenciación del ciclo de PCR. Esto no es estrictamente una PCR, ya que implica una amplificación lineal con un solo cebador en aproximadamente 20 ciclos de PCR. A continuación, se introducen didesoxinucleótidos marcados radiactivamente o con fluorescencia en las etapas finales de la reacción para generar productos de extensión de terminación de cadena. La secuenciación de PCR directa automatizada se está refinando cada vez más, lo que permite analizar mayores longitudes de ADN en una secuencia de secuenciación.

Secuenciación de ADN fluorescente automatizada:

Se trata de didesoxinucleótidos marcados con diferentes flurocromos y se utilizan para llevar a cabo la terminación de la cadena como en las reacciones estándar. La ventaja de esta modificación es que, dado que se incorporan diferentes marcadores en cada ddNTP, todos los productos se procesan en el mismo gel de electroforesis desnaturalizante.

Cada producto con su tinte específico de base es excitado por un láser y luego el tinte emite luz en su longitud de onda característica. Una rejilla de difracción separa las emisiones, que son detectadas por un dispositivo de par de carga (CCD) y la secuencia es interpretada por computadora. Además de la secuenciación en tiempo real, la longitud de la secuencia que puede analizarse supera los 500 pb.

Secuenciación de Maxam y Gilbert:

Este es un método químico de secuenciación desarrollado por Maxam y Gilbert y el método se usa a menudo para secuenciar pequeños fragmentos de ADN como oligonucleótidos. Se añade un marcador radiactivo al extremo 3 & # 8242 o al extremo 5 & # 8242 de una preparación de ADN bicatenario. A continuación, las hebras se separan mediante electroforesis en condiciones de desnaturalización y se analizan por separado.

El ADN marcado en un extremo se divide en cuatro alícuotas, cada una de las cuales se trata con sustancias químicas que actúan sobre bases específicas mediante metilación o eliminación de bases. Las condiciones se eligen de modo que cada molécula se modifique en una sola posición a lo largo de su longitud y cada base en la cadena de ADN tenga las mismas posibilidades de ser modificada.

Después de las reacciones de modificación, las muestras separadas se escinden con piperidina, que rompe los enlaces fosfodiéster exclusivamente en el lado 5 & # 8242 de los nucleótidos cuya base se ha modificado. El resultado es similar al producido por el método Sanger, ya que cada muestra ahora contiene moléculas marcadas radiactivamente de varias longitudes, todas con un extremo común (el extremo marcado) y con el otro extremo cortado en el mismo tipo de base. El análisis de los productos de reacción por electroforesis es como ya se describió para el método Sanger.


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15.1 El Código Genético

Al final de esta sección, podrá hacer lo siguiente:

  • Explicar el "dogma central" de la síntesis de proteínas de ADN
  • Describir el código genético y cómo la secuencia de nucleótidos prescribe la secuencia de aminoácidos y de proteínas.

El proceso celular de transcripción genera ARN mensajero (ARNm), una copia molecular móvil de uno o más genes con un alfabeto de A, C, G y uracilo (U). La traducción de la plantilla de ARNm en los ribosomas convierte la información genética basada en nucleótidos en un producto proteico. Ese es el dogma central de la síntesis de proteínas de ADN. Las secuencias de proteínas constan de 20 aminoácidos comunes, por lo tanto, se puede decir que el alfabeto proteico consta de 20 “letras” (Figura 15.2). Los diferentes aminoácidos tienen diferentes químicas (como ácido versus básico, o polar y no polar) y diferentes limitaciones estructurales. La variación en la secuencia de aminoácidos es responsable de la enorme variación en la estructura y función de las proteínas.

El dogma central: el ADN codifica el ARN El ARN codifica la proteína

El flujo de información genética en las células desde el ADN al ARNm y a la proteína se describe mediante el dogma central (figura 15.3), que establece que los genes especifican la secuencia de los ARNm, que a su vez especifican la secuencia de aminoácidos que componen todas las proteínas. La decodificación de una molécula a otra se realiza mediante proteínas y ARN específicos. Debido a que la información almacenada en el ADN es tan fundamental para la función celular, tiene sentido intuitivo que la célula haga copias de ARNm de esta información para la síntesis de proteínas, mientras mantiene el ADN mismo intacto y protegido. La copia de ADN a ARN es relativamente sencilla, y se agrega un nucleótido a la cadena de ARNm por cada nucleótido leído en la cadena de ADN. La traducción a proteína es un poco más compleja porque tres nucleótidos de ARNm corresponden a un aminoácido en la secuencia polipeptídica. Sin embargo, la traducción a proteína sigue siendo sistemática y colineal, de modo que los nucleótidos 1 a 3 corresponden al aminoácido 1, los nucleótidos 4 a 6 corresponden al aminoácido 2, y así sucesivamente.

El código genético es degenerado y universal

Cada aminoácido está definido por una secuencia de tres nucleótidos llamada codón triplete. Dado el diferente número de "letras" en el ARNm y los "alfabetos" de proteínas, los científicos teorizaron que los aminoácidos individuales deben estar representados por combinaciones de nucleótidos. Los dobletes de nucleótidos no serían suficientes para especificar cada aminoácido porque solo hay 16 combinaciones posibles de dos nucleótidos (4 2). En contraste, hay 64 posibles tripletes de nucleótidos (4 3), que es mucho más que el número de aminoácidos. Los científicos teorizaron que los aminoácidos estaban codificados por tripletes de nucleótidos y que el código genético estaba "degenerado". En otras palabras, un aminoácido dado podría estar codificado por más de un triplete de nucleótidos. Esto se confirmó más tarde de forma experimental: Francis Crick y Sydney Brenner utilizaron el mutágeno químico proflavina para insertar uno, dos o tres nucleótidos en el gen de un virus. Cuando se insertaron uno o dos nucleótidos, no se produjeron las proteínas normales. Cuando se insertaron tres nucleótidos, la proteína se sintetizó y fue funcional. Esto demostró que los aminoácidos deben estar especificados por grupos de tres nucleótidos. Estos tripletes de nucleótidos se denominan codones. La inserción de uno o dos nucleótidos cambió completamente el marco de lectura del triplete, alterando así el mensaje para cada aminoácido subsiguiente (Figura 15.5). Aunque la inserción de tres nucleótidos provocó la inserción de un aminoácido adicional durante la traducción, se mantuvo la integridad del resto de la proteína.

Los científicos resolvieron minuciosamente el código genético traduciendo ARNm sintéticos in vitro y secuenciando las proteínas que especificaban (Figura 15.4).

Además de los codones que instruyen la adición de un aminoácido específico a una cadena polipeptídica, tres de los 64 codones terminan la síntesis de proteínas y liberan el polipéptido de la maquinaria de traducción. Estos tripletes se denominan codones sin sentido, o codones de parada. Otro codón, AUG, también tiene una función especial. Además de especificar el aminoácido metionina, también sirve como codón de inicio para iniciar la traducción. El marco de lectura para la traducción lo establece el codón de inicio AUG cerca del extremo 5 'del ARNm. Después del codón de inicio, el ARNm se lee en grupos de tres hasta que se encuentra un codón de terminación.

La disposición de la tabla de codificación revela la estructura del código. Hay dieciséis "bloques" de codones, cada uno especificado por el primer y segundo nucleótidos de los codones dentro del bloque, por ejemplo, el bloque "AC *" que corresponde al aminoácido treonina (Thr). Algunos bloques se dividen en una mitad de pirimidina, en la que el codón termina en U o C, y una mitad de purina, en la que el codón termina en A o G. Algunos aminoácidos obtienen un bloque completo de cuatro codones, como la alanina (Ala). , treonina (Thr) y prolina (Pro). Algunos obtienen la mitad de pirimidina de su bloque, como la histidina (His) y la asparagina (Asn). Otros obtienen la mitad purina de su bloque, como el glutamato (Glu) y la lisina (Lys). Tenga en cuenta que algunos aminoácidos obtienen un bloque y medio bloque para un total de seis codones.

La especificación de un solo aminoácido por múltiples codones similares se denomina "degeneración". Se cree que la degeneración es un mecanismo celular para reducir el impacto negativo de las mutaciones aleatorias. Los codones que especifican el mismo aminoácido normalmente solo difieren en un nucleótido. Además, los aminoácidos con cadenas laterales químicamente similares están codificados por codones similares. Por ejemplo, el aspartato (Asp) y el glutamato (Glu), que ocupan el bloque GA *, están cargados negativamente. Este matiz del código genético asegura que una mutación de sustitución de un solo nucleótido podría especificar el mismo aminoácido pero no tener ningún efecto o especificar un aminoácido similar, evitando que la proteína se vuelva completamente no funcional.

El código genético es casi universal. Con algunas excepciones menores, prácticamente todas las especies usan el mismo código genético para la síntesis de proteínas. La conservación de codones significa que un ARNm purificado que codifica la proteína globina en caballos podría transferirse a una célula de tulipán, y el tulipán sintetizaría globina de caballo. El hecho de que solo haya un código genético es una evidencia poderosa de que toda la vida en la Tierra comparte un origen común, especialmente considerando que hay alrededor de 10 84 combinaciones posibles de 20 aminoácidos y 64 codones tripletes.

Enlace al aprendizaje

Transcriba un gen y traduzcalo en proteína mediante el emparejamiento complementario y el código genético de este sitio.


Esta es la Parte B, Bioquímica del ADN y el ARN, en el tema del módulo. Resumen de contenido. Esta parte del tema tiene tres secciones: Tutorial de contenido, animaciones y actividades.

La bioquímica del ADN y el ARN

Ácido desoxirribonucleico (ADN) La unidad estructural del ADN es el nucleótido y el ADN en sí es un polímero de nucleótidos. Un nucleótido tiene tres partes básicas: 1. Una de cuatro posibles bases nitrogenadas ADN: purinas - adenina y guanina pirimidina - timina y citosina 2. Azúcar pentosa llamado desoxirribosa 3. Grupo fosfato Cada nucleótido se nombra de acuerdo con la base nitrogenada, adenina para el base - adenosina para el nucleótido completo, guanina para la base - guanosina para el nucleótido completo, etc.

Los nucleótidos están unidos por puentes de diéster de fosfato entre grupos hidroxilo de moléculas de desoxirribosa de nucleótidos adyacentes. Esto deja colgando libres las bases nitrogenadas.

Los nucleótidos del ADN existen como dos hebras, enrolladas para formar una doble hélice. La dirección de la cadena principal de azúcar-fosfato corre en direcciones opuestas o antiparalela en las dos cadenas. Las hebras se mantienen juntas mediante enlaces de hidrógeno entre bases complementarias. Las pirimidinas (pequeñas) solo se unen a las purinas (grandes). La citosina se une a la guanina y la adenina se une a la timina.

Doble hélice de ADN: observe la columna vertebral antiparalela en la figura inferior.

La estructura del ARN del ácido ribonucleico (ARN) se diferencia del ADN de la siguiente manera:

1. El carbohidrato es ribosa en lugar de desoxirribosa.

2. La base de pirimidina uracilo reemplaza a la timina como base nitrogenada.

3. El ARN se encuentra en una sola hebra. [El ARN puede tener nucleótidos dentro de su secuencia que se emparejan con otras bases en la misma hebra. Esto le da a la molécula de ARN su estructura secundaria.] 4. El ARN se puede encontrar como 4 tipos diferentes en 4 roles diferentes ARN mensajero (ARNm), ARN de transferencia (ARNt), ARN nuclear pequeño (ARNnn) y ARN ribosómico (ARNr). En las células eucarióticas, el ADN se encuentra principalmente en el núcleo, mientras que el ARN se produce principalmente en el núcleo, pero ingresa libremente al citoplasma. Las transcripciones primarias son las moléculas de ARN más nuevas que se transcriben directamente a partir del ADN y no se encontrarán fuera del núcleo. Contienen intrones y exones. Los intrones se empalman y se añaden tratamientos especiales para estabilizar el ARN en los extremos para producir ARNm. El ARNm es la molécula que proporciona la secuencia para la producción de proteínas. El ARNr y muchas subunidades de proteínas forman los ribosomas. Los ribosomas funcionan en el citoplasma y proporcionan la maquinaria de traducción. Los ARNt llevan un aminoácido, y cada aminoácido tiene uno o más ARNt que lo transportan. Cada molécula de ARNt aporta un aminoácido a la cadena de proteína en crecimiento en el ribosoma.

Centro de capacitación en biotecnología de la Universidad de Calgary


Secuencia de nucleótidos - Biología

En el ejercicio siguiente, se le dará una secuencia de ADN desconocida y se le pedirá que utilice una herramienta web para traducir la secuencia en una secuencia de aminoácidos y, con suerte, identificar el marco de lectura adecuado. Luego, guardará esta secuencia de aminoácidos en un programa de procesamiento de texto (o se la enviará por correo electrónico) si desea utilizarla en el próximo ejercicio.

Obteniendo tu secuencia
En el laboratorio, esto podría obtenerse secuenciando un clon de una biblioteca de ADNc o aislando un fragmento de ADN amplificado de una amplificación por PCR. A menudo, cuando secuenciamos un producto de este tipo, encontramos que tenemos un fragmento inesperado de ADN que debemos analizar. Aquí proporcionaremos una secuencia parcial al azar de nuestra base de datos de secuencias. Aparecerá una secuencia de nucleótidos parcial en la ventana siguiente después de hacer clic en el botón Obtener secuencia de genes.

Traduciendo la secuencia
Varios sitios en la web realizan una traducción de una secuencia de entrada. Al hacer clic en el enlace de Expasy a continuación, se abrirá una nueva ventana que le dará acceso a una herramienta de traducción. La traducción de la secuencia de ADN se realiza leyendo la secuencia de nucleótidos tres bases a la vez y luego mirando una tabla del código genético para llegar a una secuencia de aminoácidos. Este programa examina la secuencia de entrada en los seis cuadros posibles (es decir, leyendo la secuencia de 5 'a 3' y de 3 'a 5' comenzando con nt 1, nt 2 y nt 3). Lo que normalmente buscamos al identificar la traducción adecuada es el marco que da la secuencia de aminoácidos más larga antes de que se encuentre un codón de terminación. (Dado que hay 64 codones y tres códigos para tonterías, esperamos que aparezca un codón de terminación en promedio una vez cada 20 aminoácidos si simplemente leemos una secuencia "fuera de marco". Sin embargo, "en promedio" es solo eso, y Es posible que un marco de lectura incorrecto dé una secuencia extendida sin codones de parada. El próximo ejercicio abordará ese problema.

Utilizaremos las herramientas de Expasy para la traducción. Al hacer clic en él, se abrirá una nueva ventana para que pueda volver a esta ventana para obtener instrucciones y copiar su secuencia.


Biología Molecular

Hace 85 millones de años. Esto corresponde a una tasa de divergencia de reemplazo del 0,12% por millón de años.

Hace 270 millones de años, esto da una tasa de 0.09% por millón de años.

50%, lo que da una tasa de 0,1% por millón de años.

0,096% por millón de años (o un UEP de 10,4). Teniendo en cuenta las incertidumbres en la estimación de los momentos en que las especies divergieron, los resultados apoyan bien la idea de que existe un reloj lineal.

100 millones de años de separación. Una interpretación es que una fracción de aproximadamente la mitad de los sitios silenciosos se satura rápidamente (en 100 millones de años) por mutaciones, esta fracción se comporta como sitios neutrales. La otra fracción acumula mutaciones más lentamente, a una velocidad aproximadamente igual a la de los sitios de reemplazo. Esta fracción identifica sitios que son silenciosos con respecto a la proteína, pero que están bajo presión selectiva por alguna otra razón.

Hace 100 millones de años. Por tanto, la separación entre los genes de globina embrionaria y fetal puede haber precedido o acompañado a la radiación de los mamíferos.


Usando la tabla de codones

Las tablas de codones, como la de la Figura 8, dan los aminoácidos codificados por ARNm codones, no codones de ADN. Si recibe una secuencia de ADN, primero debe transcribirla para producir el ARNm, luego puede traducirla a una secuencia de aminoácidos utilizando la tabla de codones.

La Figura 9 muestra dos tablas de codones diferentes: una cuadrada y una redonda. Ambos transmiten la misma información. Este ejemplo muestra cómo usar ambas tablas para determinar el aminoácido codificado por la secuencia de ADN TGC. Después de la transcripción, el ARNm producido tendría la secuencia ACG. Para usar la mesa cuadrada, comience con la primera base (A), que se muestra en rojo. Luego, identifica la segunda base (C), que se muestra en verde. En el cuadro donde se cruzan la primera y la segunda base, encontrará la tercera base (G), que se muestra en violeta. Esto identifica el aminoácido codificado por el codón ACG del ARNm como Thr (la abreviatura de tres letras del aminoácido treonina). Para usar la mesa redonda, comience en el centro con la primera base (A), encerrada en un círculo rojo. Muévase hacia afuera a la segunda base (C), rodeada de verde. Otro paso hacia la tercera base (G), que está rodeada de púrpura. Esto nuevamente identifica el aminoácido codificado por el codón ACG del ARNm como treonina (abreviado Thr o T).

Figura 9 Usando la tabla de codones. La tabla de codones cuadrados es una modificación del trabajo de los NIH y está en el dominio público. La tabla de codones redondos también es de dominio público.


Ver el vídeo: El código genético nucleótidos y aminoácidos (Enero 2022).